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    如何進(jìn)行蛋白樣品的制備?要注意些什么?

    發(fā)布時(shí)間: 2022-02-15  點(diǎn)擊次數(shù): 2050次

    蛋白樣品的制備是蛋白質(zhì)組研究的第一步,無論后續(xù)采用怎樣的分離或鑒定手段,樣品制備都是關(guān)鍵步驟。因此,為了*分析所有的細(xì)胞內(nèi)蛋白,組織與細(xì)胞必須進(jìn)行有效的破碎。本文在此介紹幾種較為常見的方法。


    變性條件——SDS LB直接裂解:

    用常溫或者高溫預(yù)熱過(預(yù)熱更有利于阻止蛋白水解或者磷酸酶去磷酸化,但容易遺忘,而LB久煮會(huì)改變某些性質(zhì))的1*SDS LB(或者略高1.5*)直接加到細(xì)胞或者組織上并煮樣。


    通常6孔板細(xì)胞80%以上密度,需200ul,其他按平板面積比類推。通常條件下,SDS LB都是過量的(因此不一定要嚴(yán)格參考SDS LB稀釋比);如果SDS LB不夠,樣品核酸、蛋白濃度過高時(shí),煮樣后會(huì)發(fā)現(xiàn)tip吸不上來,非常粘、一砣一砣的,很容易堵住tip。

    這時(shí)候常規(guī)做法有兩種:

    1.再煮5min。常規(guī)煮樣時(shí)間3-5min,樣品過濃時(shí)就煮10min;

    2.如果10min煮樣后,仍然吸不起來,才適當(dāng)增加SDS LB,繼續(xù)煮;也可以對(duì)樣品進(jìn)行超聲。煮樣時(shí)間若過長,蛋白會(huì)凝固,此時(shí)以失去繼續(xù)WB的意義,請(qǐng)丟棄(判斷標(biāo)準(zhǔn):出現(xiàn)明顯的蛋白沉淀和水分層)


    此方法的缺點(diǎn)是:SDS LB煮過的樣品如果用來做IP,需要特殊方法,因此,這種制備方法制備的樣品有使用局限。

    非變性裂解法:

    裂解細(xì)胞請(qǐng)盡量冰上操作,減緩酶解作用。

    裂解液配方是:20mM Tris/HCl, pH7.6, 100mM NaCl, 20mM KCl,1.5mM MgCl2, 0.5% NP-40 and protease inhibitors (20μg/ml leupeptin,10μg/ml pepstatin A and 10 μg/mlaprotinin)(此裂解液可用于抽提核蛋白),其中蛋白酶抑制劑可用0.5mMPMSF替代;如果還要做磷酸化蛋白,加1mM Na3VO4(現(xiàn)加現(xiàn)用),10 mM NaF, 1 mM Na3VO4, 50 mMbeta-GP。


    此方法的優(yōu)點(diǎn):NaCl濃度略低于生理狀態(tài),保證裂解細(xì)胞的方式較為溫和,便于隨后的IP等試驗(yàn)。其他Na鹽濃度的細(xì)胞裂解液也很常見,諸如0.15M(生理鹽濃度)、0.3M、0.6M(高鹽系列,裂解細(xì)胞時(shí)染色體會(huì)析出,細(xì)胞碎片和沉淀非常粘稠)及0.8-1.2M;0.3M及以下適合 IP試驗(yàn),0.6M及以上適合純化蛋白,尤其相互作用較強(qiáng)的復(fù)合體,要得到純化的一些復(fù)合體的組成蛋白一般采用(木及)端的高鹽裂解細(xì)胞。

    組織塊裂解:

    組織塊較大用勻漿的方法最合適,現(xiàn)在有不少轉(zhuǎn)頭很小的勻漿器。

    當(dāng)組織超微量的時(shí)候,比如50mg新鮮癌組織,建議采用的方法是

    1. 低溫(剪)攪碎,成肉糜狀。

    2. 錫箔紙包裹好,放入少量液氮,快速敲擊(控制力量,盡量避免弄破錫箔紙),進(jìn)一步破碎;反復(fù)多次。

    3. 用上述細(xì)胞裂解液回收。

    分泌型蛋白富集:

    用無血清培養(yǎng)基培養(yǎng)細(xì)胞,收集上清液用于WB檢測(cè);如果含量過低,需要用TCA沉淀富集。


    理論上,從普通培養(yǎng)基中收集分泌蛋白,此時(shí)對(duì)細(xì)胞生長條件的影響最小,是最佳的實(shí)驗(yàn)條件;但是這存在隱憂。因?yàn)楹宓呐囵B(yǎng)基中含有非常豐富的BSA(牛血清白蛋白)之類的蛋白質(zhì),除非你進(jìn)一步分離純化,否則直接用這種樣品去WB會(huì)有非常大的麻煩,尤其當(dāng)你的蛋白在60-46kDa之間的時(shí)候;用“任何"抗體去檢測(cè)這一區(qū)間的蛋白,都會(huì)有一片非常強(qiáng)的信號(hào)。因?yàn)榇藚^(qū)間蛋白(主要是BSA)濃度過于富集,會(huì)非特異性粘附“任意"抗體,從而最終被識(shí)別。同理,采用SDS LB裂解細(xì)胞制備樣品前,通常要用PBS洗滌,其目的之一是去除培養(yǎng)基中的BSA。


    采用無血清培養(yǎng)基收集細(xì)胞上清除了改變細(xì)胞的生理狀態(tài)外(可能激活未知信號(hào)途徑,諸如AKT等),還會(huì)出現(xiàn)的問題是:

    1. 即使采用了無血清收集上清,仍然有大量雜蛋白,但相對(duì)好很多。

    2. 選用了上清,由于蛋白濃度太稀,通常要采用TCA沉淀富集,再重新溶解。

    a. TCA沉淀對(duì)半定量操作要求非常高,因?yàn)楹苋菀壮恋聿怀浞只蛘唠x心操作丟失,尤其在離心過程,離心管的擺放非常講究,要180度翻轉(zhuǎn)離心兩次。

    b。重新溶解時(shí),由于蛋白需要在一定的鹽離子條件下才能重新溶解,你要摸索充分溶解的條件,相對(duì)麻煩。


    實(shí)際上,如果你不是非常強(qiáng)調(diào)蛋白的分泌有什么生理功能,一般不建議檢測(cè)上清,尤其半定量的WB實(shí)驗(yàn)檢測(cè)不同樣品間的差異。

    注意事項(xiàng)
    圖片

    樣品制備完,應(yīng)立即低溫保存【-20度短期(幾天);-80度長期;例如,IP用樣品應(yīng)直接進(jìn)行IP,避免凍融破壞蛋白質(zhì)間弱的相互作用】。SDS LB煮沸過的樣品凍融會(huì)存在另一個(gè)問題,SDS沉淀;SDS在4度就會(huì)沉淀,何況-80度。上樣前應(yīng)加熱充分溶解,否則從加樣口向下拖帶(SDS LB不夠,樣品未充分溶解也會(huì)出現(xiàn)類似拖尾;上樣過大也會(huì))。

     

    在樣品制備過程中,另一個(gè)需要注意的問題是,從樣品制備的起始階段就要注意定量問題;WB本身系統(tǒng)誤差有20%,太細(xì)微的差別經(jīng)常忽略不計(jì)。細(xì)胞樣品可以先計(jì)數(shù)再接種,短時(shí)間內(nèi)即使細(xì)胞生長有差異也不會(huì)對(duì)WB結(jié)果影響太多。組織樣品,從腫瘤組織的大?。ǚQ重)開始,裂解液的體積都是精確定量的,操作過程也 盡量避免蛋白損失。


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